معلومة

بروتينات COPI / COPII و kinesins / dyneins

بروتينات COPI / COPII و kinesins / dyneins


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

أفكر في نقل البروتين من ER إلى Golgi ، وقد قرأت أن هذا يتضمن غلاف بروتين COPII. لقد قرأت أيضًا أن هذا هو شكل من أشكال النقل المتقدم ، وفي أماكن أخرى ، فإن kinesins مسؤولة عن النقل المتقدم حيث تنتقل من القطب السالب إلى القطب الموجب (الخارجي) للأنابيب الدقيقة.

وهكذا بدا لي أن kjnesins تحمل حويصلات COPII التي تحمل البروتينات من ER إلى Golgi.

ومع ذلك ، فإن بحث Google عن المصطلحين "kinesins" و "COPII" معًا لا يبدو أنه يسفر عن أي شيء حول kinesins التي تحمل COPII.

من ناحية أخرى في هذه المقالة تربط COPII مع dynsctjn ، وهو ما لم أسمع به من قبل.

هل يعرف شخص ما الرابط بين نقل COPI و COPII و / أو النقل الرجعي والتقدمي مع البروتينات الحركية للأنابيب الدقيقة kinesin و dynein؟ من أين تأتي dynectins في هذا؟ هل تربط الحويصلة بالداينين ​​أم أنها نوع مختلف من البروتين الحركي؟ إذا كانت هذه هي الحالة الأولى ، فلماذا يسمى هذا النقل بالتقدم المتقدم إذا كان لا يستخدم kinesins؟ هل المصطلحات التقدمية والرجعية لا ترتبط مباشرة باستخدام كينيسين / داينينز؟


سؤال مهم. يشير مصطلح التقدم المتقدم إلى الحركة في الاتجاه الأمامي. في سياق الاتجار الحويصلي ، يشير التقدم المتقدم إلى (1) الحركة من موقع تخليق البروتين في الشبكة الإندوبلازمية الخشنة (RER) باتجاه Golgi ثم (2) الحركة من Golgi نحو الوجهة النهائية في الخلية.

تعتمد كلتا العمليتين على الأنابيب الدقيقة للنقل. الأنابيب الدقيقة قطبية وتشع من مركز تنظيم الأنابيب الدقيقة (MTOC) مع نهاياتها (+) موجهة نحو محيط الخلية:

هناك فئتان عريضتان من المحركات الجزيئية التي تسهل الحركة الموجهة على طول الأنابيب الدقيقة. Kinesins بشكل عام هي (+) - محركات موجهة نهائية بينما dyneins هي (-) - نهاية موجهة:

يجب أن تعطيك هذه الصور تلميحًا بالفعل. قد يكون سؤالك قد نشأ بسبب افتراض أن ER يقع مركزيًا بالقرب من MTOC مع Golgi إلى حد ما. هذا غير صحيح. في الواقع ، يتجمع مجمع جولجي بنشاط بالقرب من MTOC عن طريق الحركة على الأنابيب الدقيقة. علاوة على ذلك ، يمتد ER على طول شبكة الأنابيب الدقيقة باتجاه الطرف (+) - الطرف. إذا أخذنا معًا ، فمن الواضح أن الأنابيب الدقيقة (-) - تقع بالقرب من Golgi وأن النقل إليها من أي جزء من الخلية ، بما في ذلك RER ، يتطلب (-) - نهاية المحرك dynein. يتطلب النقل المتقدم اللاحق من Golgi إلى وجهة محددة في الخلية ، أو من خلال المسار الإفرازي ، حركة المحرك الموجه (+) - نهاية المحرك. النقل الرجعي من Golgi إلى ER سيستخدم أيضًا kinesin:


المقال المذكور في السؤال (والذي أشرت إليه أيضًا في هذه الإجابة) ، يذكر أن حويصلات COPII مرتبطة بالأنابيب الدقيقة عبر dynactin. Dynactin عبارة عن مركب بروتيني يستخدم لتنشيط البضائع وتكييفها مع dynein (على سبيل المثال ، ترتبط حويصلات COPII بالأنابيب الدقيقة عبر مجمع dynein / dynactin):


بروتينات COPI / COPII و kinesins / dyneins - علم الأحياء

الميل في بيولوجيا الخلية هو فرق تسد. على سبيل المثال ، أدت عقود من العمل الشاق إلى فهم الشبكة الإندوبلازمية (ER) وهيكل جولجي وديناميكياته ونقله. في موازاة ذلك ، كشف باحثو الهيكل الخلوي عن تنوع رائع في البنية والوظيفة الخلوية في كل من الأكتين والأنابيب الدقيقة. تتداخل هذه المجالات بشكل متزايد ، مما يستلزم فهمًا لبيولوجيا العضية والهيكل الخلوي. تتناول هذه المراجعة الروابط بين الهيكل الخلوي للأكتين / الأنبوب الدقيق والعضيات في الخلايا الحيوانية ، مع التركيز على ثلاثة مجالات رئيسية: هيكل ER ووظيفة نقل ER-to-Golgi وهيكل ووظيفة Golgi. لقد كان إجراء هذه الاتصالات أمرًا صعبًا لعدة أسباب: الأحجام الصغيرة والخصائص الديناميكية لبعض المكونات ، وحقيقة أن عناصر الهيكل الخلوي الخاصة بالعضية يمكن بسهولة حجبها عن طريق المزيد من الهياكل الهيكلية الخلوية الوفيرة والصعوبات في تصوير الأغشية والهيكل الخلوي في وقت واحد ، لا سيما في البنية التحتية. مستوى. أحد المفاهيم الرئيسية هو أن الهيكل الخلوي يستخدم بشكل متكرر لتوليد القوة لحركة الغشاء ، مع نتيجتين محتملتين: إزاحة العضية ، أو تشوه غشاء العضية. أثناء مناقشة القضايا الشائعة في الخلايا الميتازوان بشكل عام في البداية ، قمنا لاحقًا بتسليط الضوء على ميزات محددة للخلايا العصبية ، نظرًا لأن هذه الخلايا شديدة الاستقطاب تمثل تحديات فريدة للتوزيع العضوي والديناميكيات.


ملخص

يتعين على ناقلات النقل العاملة بين الأجزاء المبكرة في المسار الإفرازي للثدييات أن تسافر مسافات طويلة في الخلية من خلال الاعتماد في الغالب على شبكة الأنابيب الدقيقة والبروتينات الحركية المرتبطة بها. على الرغم من أن النقل المتقدم من الشبكة الإندوبلازمية (ER) إلى مجمع جولجي يتم بوساطة داينين ​​السيتوبلازم 1 ، 2 ، فإن هوية المحرك (المحركات) التي تتوسط في النقل في الاتجاه الرجعي غير واضحة حاليًا. اقترحت بعض الدراسات أن مجمع كينيسين 2 غير المتجانسة يلعب دورًا في النقل بين ER و Golgi 3 ، 4. هنا ، قمنا بفحص وظيفة kinesin-2 باستخدام نهج تدخل RNA لتقليل تنظيم التعبير عن KAP3 ، الوحدة الفرعية غير الحركية لـ kinesin-2 ، في خلايا هيلا. ينتج عن إسكات KAP3 تفتيت جهاز جولجي وتغيير في توطين الحالة المستقرة لمستقبلات KDEL (KDEL-R). باستخدام فحوصات النقل المحددة ، نوضح أن معدل حركة المرور الإفرازية المتقدمة لا يتأثر في هذه الخلايا ولكن النقل الرجعي المعتمد على KDEL-R تم إلغاؤه بشدة. تدعم بياناتنا بقوة دور kinesin-2 في مسار النقل الرجعي المعتمد على KDEL-R- / COPI من مجمع Golgi إلى ER.

العنوان الحالي: Institució Catalana de Recerca I Estudis Avançats and Centre de Regulacio Genomica، Dr. Aiguader 88، 08003 Barcelona، Spain.


بروتين الاتجار Tmed2 / p24β1 مطلوب لتكوين جنين الفأر والمشيمة

أثناء النقل الحويصلي بين الشبكة الإندوبلازمية وجولجي ، يشكل أعضاء عائلة البروتين TMED / p24 مجمعات غير متجانسة قليلة القسيمات تسهل التعرف على حمولة البروتين بالإضافة إلى تبرعم الحويصلة. بالإضافة إلى ذلك ، فإنهم ينظمون مستوى التعبير عن بعضهم البعض & # x27s. على الرغم من تحليلات توزيع البروتين TMED / p24 في خلايا الثدييات والخميرة و C. ايليجانس، لا يُعرف الكثير عن دور هذه العائلة في تكوين الجنين الفقاري. أبلغنا عن وجود طفرة نقطية واحدة في Tmed2 / ص 24β1 في خط فأر متحور ، 99J ، تم تحديده في شاشة طفرات ENU للتشوهات التنموية المتنحية. هذه الطفرة لا تؤثر Tmed2 / ص 24β1 مستويات mRNA ولكنها تؤدي إلى فقدان TMED2 / p24β1 بروتين. قبل الموت في منتصف الحمل ، تظهر الأجنة الطافرة متماثلة اللواقح 99J تأخرًا في النمو ، واستطالة غير طبيعية في المنقار والذيلية ، وحلقات قلب عشوائية ، وغياب طبقة المتاهة من المشيمة. نجد ذلك Tmed2 / ص 24β1 يتم التعبير عنها عادة في الأنسجة التي تظهر عيوبًا مورفولوجية في 99J أجنة متحولة وأن هذه الأنسجة المصابة تفتقر إلى TMED2 / p24β1 شركاء القلة ، TMED7 / p24γ3 و TMED10 / p24δ1. تكشف بياناتنا عن متطلبات TMED2 / p24β1 البروتين في تكوين جنين الفأر والمشيمة.


تقود المحركات الجزيئية نقل الحويصلات والعضيات داخل الخلية. تقليديا ، تم النظر في عمليات النقل هذه بشكل منفصل عن أحداث تهريب الأغشية ، مثل البراعم والاندماج المنظم. ومع ذلك ، فقد كشف التقدم الأخير عن روابط آلية تدمج هذه العمليات داخل الخلية. ثبت الآن أن بروتينات Rab ، التي تعمل كمنظمين رئيسيين للاتجار داخل الخلايا ، تقوم بتجنيد محركات معينة لأغشية العضية. يعد التوظيف المستقل لـ Rab للمحركات بواسطة المهايئ أو بروتينات السقالات آلية رئيسية أيضًا. بمجرد تجنيدها في الحويصلات والعضيات ، يمكن لهذه المحركات بعد ذلك قيادة النقل الموجه ، وقد يؤثر هذا النقل الموجه بدوره على كفاءة أحداث التهريب. هنا ، نناقش هذا التنظيم المنسق للاتجار والنقل ، والذي يوفر آلية قوية للتحكم الزماني والمكاني للديناميات الخلوية.

نحن نستخدم ملفات تعريف الارتباط للمساعدة في تقديم وتحسين خدماتنا وتخصيص المحتوى والإعلانات. من خلال الاستمرار فإنك توافق على استخدام ملفات تعريف الارتباط .


خيارات الوصول

احصل على حق الوصول الكامل إلى دفتر اليومية لمدة عام واحد

جميع الأسعار أسعار صافي.
سيتم إضافة ضريبة القيمة المضافة في وقت لاحق عند الخروج.
سيتم الانتهاء من حساب الضريبة أثناء الخروج.

احصل على وصول محدود أو كامل للمقالات على ReadCube.

جميع الأسعار أسعار صافي.


صندوق أدوات الزرد - المجاهر وعلم الوراثة والأدوية

نظرة عامة على أسماك الزرد

تنتج أسماك الزرد أعدادًا كبيرة من البيض المخصب خارجيًا ، والتي تتطور بسرعة إلى أجنة شفافة وتتقدم إلى يرقات تتغذى بحرية في غضون 5 أيام بعد الإخصاب (dpf). تكتمل عملية الهضم في غضون ساعات من الإخصاب وبواسطة 1 dpf ، يتم إنشاء محاور جنينية وجاري التطور العصبي. تم تحقيق خريطة رائعة لتقسيم الخلايا وحركتها خلال هذه الأحداث التنموية المبكرة من خلال تتبع النوى المسمى بشكل فردي باستخدام الفحص المجهري المتقدم (Keller et al. ، 2008 Schmid et al. ، 2013). بحلول نهاية 2 dpf ، يكون تكوين الأعضاء جاريًا في جميع أنحاء الجنين ، وبحلول 5 dpf ، تؤدي معظم الأعضاء وظائف متخصصة. على الرغم من استخدام الزرد تقليديًا لدراسة التطور الجنيني ، إلا أنه يتم التحقيق بنشاط في مجالات مثل السلوك وعلم الأمراض والأمراض المعدية وفحص الأدوية. هنا ، نركز على أدوات أسماك الزرد المستخدمة لدراسة بيولوجيا الخلية في الجسم الحيبهدف فهم التطور والمرض.

وسم الهياكل الخلوية في الزرد

تتطلب الدراسات عالية الدقة للتطور الجنيني ونماذج المرض تحليل سلوك الخلايا الفردية والبنى تحت الخلوية والبروتينات في سياق نسيج أو كائن حي سليم. أحدثت البروتينات الفلورية ثورة في بيولوجيا الخلية. ومع ذلك ، فإن الحجم الصغير النسبي والطبيعة الديناميكية للمكونات الخلوية تمثل تحديات للتصوير. يتفاقم هذا بسبب التعقيد الخلوي للحيوانات بأكملها. وهكذا ، على عكس الدراسات الأنيقة التي تصف ديناميكيات العضية في الخلايا المستزرعة أو الخميرة ، لا يُعرف سوى القليل نسبيًا عن هذه العمليات في الفقاريات.

إن تطوير مجموعة أدوات لأسماك الزرد تقوم بتسمية وتتبع وقياس الهياكل داخل الخلايا المماثلة لتلك المتوفرة في الثدييات هو عمل مستمر. أدت الجهود الحديثة والمتضافرة من قبل مجتمع الزرد والعديد من الشركات إلى تحسين مكتبة الأجسام المضادة التي تتعرف على بروتينات الزرد ، والتي تم تصنيفها في قاعدة بيانات كائن نموذج الزرد (http://zfin.org). ومع ذلك ، تظل الأجسام المضادة المحددة للعديد من الهياكل غير متوفرة ، ولا يسمح تلطيخ الأجسام المضادة بالتصوير الحي ، وهو قوة نظام الزرد. يوفر تطوير الجينات المعدلة وراثيًا (Kawakami ، 2005 Kwan et al. ، 2007) والأصباغ الحيوية بديلاً جيدًا. يتم سرد علامات الفلورسنت جيدة المواصفات ذات الصلة بالموضوعات التي تمت مناقشتها هنا في الجدول 1 والموضحة في الشكل 1F. يوضح الشكل 1 مثالين على هذه الجينات المعدلة وراثيًا: Tg (بكتريا: GalT-GFP) تعبر الأسماك عن جزء من Galactose-1-phosphate uridyl transferase (GALT) مدمجًا في GFP تحت مروج β-actin شبه في كل مكان (Gerhart et al. ، 2012) لتمكين تصوير trans-Golgi في الجنين النامي باستخدام كل من مجهر مجسم مضان منخفض الدقة (الشكل 1 أ-ج) والتصوير متحد البؤر (الشكل 1 د). الثاني، Tg (ef1a: dclk-GFP) يقوم الخط (Tran et al. ، 2012) بتسمية الأنابيب الدقيقة باستخدام GFP ، وعند استخدامه مع علامة الحويصلة clathrin المدمجة في dsRed (MS و MM ، بيانات غير منشورة الشكل 1E) ، فإنه يوفر عرضًا في الوقت الفعلي للأنابيب الدقيقة- النقل الحويصلي القائم.

علامات البروتين الفلورية للتركيبات تحت الخلوية في الزرد. (أ - ج) بث مباشر 2 dpf Tg (بكتريا: GalT-GFP) جنين يبرز مجمع trans-Golgi. يتم تكبير المنطقة المعبأة في B في الإسقاط متحد البؤر C. (D) من خلال تجميد الكبد من 5 dpf Tg (بكتريا: GalT-GFP) يرقة. النوى ملطخة بـ DAPI (رمادي). (ه) العضلات في يعيش 1 dpf Tg (ef1a: dclk-GFP) الجنين مع البروتين المرتبط بالأنابيب الدقيقة (DCK) الموسوم بـ GFP والحويصلات المميزة بـ clathrin-DS-Red (أرجواني). (F) علامات عضيات ذات علامات بروتين الفلورسنت الزرد التي يمكن التعبير عنها بالمواد المعدلة وراثيا. PM ، غشاء البلازما LE ، الجسيمات الداخلية المتأخرة EE ، الإندوسومات المبكرة RE ، إعادة تدوير الجسيمات الداخلية.

علامات البروتين الفلورية للتركيبات تحت الخلوية في الزرد. (أ - ج) بث مباشر 2 dpf Tg (بكتريا: GalT-GFP) جنين يبرز مجمع trans-Golgi. يتم تكبير المنطقة المعبأة في B في الإسقاط متحد البؤر C. (D) من خلال تجميد الكبد من 5 dpf Tg (بكتريا: GalT-GFP) يرقة. النوى ملطخة بـ DAPI (رمادي). (ه) العضلات في يعيش 1 dpf Tg (ef1a: dclk-GFP) الجنين مع البروتين المرتبط بالأنابيب الدقيقة (DCK) الموسوم بـ GFP والحويصلات المميزة بـ clathrin-DS-Red (أرجواني). (F) علامات عضيات ذات علامات بروتين الفلورسنت الزرد التي يمكن التعبير عنها بالمواد المعدلة وراثيا. PM ، غشاء البلازما LE ، الجسيمات الداخلية المتأخرة EE ، الإندوسومات المبكرة RE ، إعادة تدوير الجسيمات الداخلية.

ينظم هذا ترجمة GFP لعكس مستويات الفرم الذاتية ومراقبة استجابة ضغط ER. تم العثور على GFP في الأنسجة العصبية أثناء ER والضغط الحراري.

تسمح الأصباغ الحيوية الفلورية أيضًا بتصوير الهياكل تحت الخلوية في الجسم الحي. BODIPY ، Alizarin Red ، النقاط الكمومية والأصباغ ، مثل MitoTracker أو LysoTracker ، هي بقع مضادة متعددة الاستخدامات لتصور العمليات الخلوية الديناميكية في الأسماك الحية (Cooper et al.، 2005 He et al.، 2009 Köster and Fraser، 2006 Rieger et al.، 2005 Zhang et al. ، 2008). توفر العوامل المعدلة وراثيًا والأصباغ مجتمعة رؤية مجهرية للعمليات داخل الخلايا ونظرة عيانية لكيفية تعطيل العمليات الخلوية الأساسية للتطور أو التسبب في المرض.

التصوير

يتم إجراء العديد من دراسات تصوير أسماك الزرد باستخدام المجاهر المتاحة لمعظم الباحثين ، في حين يتطلب التحليل المتعمق للحركات الديناميكية أو التحليلات الشكلية للهياكل دون الخلوية تقنيات الفحص المجهري المتقدمة التي تقتصر على الباحثين الذين لديهم تدريب متخصص والوصول إلى المرافق ذات هذه القدرات .

يمكن استخدام مجسات epifluorescent و stereomicroscopes منخفضة الدقة للكشف عن التغيرات الجسيمة في توطين أو شدة العديد من العلامات ، ويمكن للفحص المجهري متحد البؤر القياسي تصوير الخلايا القريبة من سطح الأجنة الحية ولكن تصوير الخلايا الأعمق يتطلب أقسامًا نسيجية. تم توفير آراء غير مسبوقة حول كيفية تحرك الخلايا بشكل فردي وفي تناسق في الجنين النامي باستخدام الفحص المجهري للورقة الضوئية لتتبع النوى الفردية الموصوفة بالهيستونات ذات العلامات الفلورية (Huisken and Stainier ، 2009 Keller et al. ، 2008). قدم الفحص المجهري لإضاءة المستوى الانتقائي عرضًا ثلاثي الأبعاد لحركة خلايا الأديم الباطن في الأجنة الحية القديمة (شميد وآخرون ، 2013). تم استخدام التصوير متعدد الفوتونات للتحقيق في كيفية تجميع الدوائر العصبية أثناء تطور الشبكية من خلال تتبع التغيرات الديناميكية في بنية الخلية والاتصال (Williams et al. ، 2013) ، وقد تم استخدام الفحص المجهري فائق الدقة لتصوير جزيء مستقبل واحد يكشف عن دور لـ تجمع المستقبلات في الاستجابة المناعية المضادة للفيروسات (Gabor et al. ، 2013). يتم إنشاء العديد من صور أسماك الزرد المذهلة مع استمرار تحسين تقنيات التصوير.

علم الوراثة

تم تسلسل جينوم الزرد وتعليقه ، ومعظم جينات الزرد محفوظة بشكل كبير في الثدييات ، مع تحديد تقويم العظام لأسماك الزرد لـ 70٪ من الجينات البشرية (Howe et al. ، 2013). تعد عملية التكاثر والشاشات الجينية الأمامية من الأساليب المستخدمة على نطاق واسع في الزرد ، والتطورات الحديثة في الأساليب الجينية العكسية لها تأثير كبير على هذا المجال. يوضح المربع 2 طرق توليد الجينات المحورة والطفرات المستهدفة باستخدام TALENs وأنظمة Crispr / Cas.

تسمح الشاشات الجينية إلى الأمام بالاكتشاف غير المتحيز للجينات التي تساهم في نمط ظاهري محدد وتنتج آلاف الطفرات في جينوم أسماك الزرد. ومع ذلك ، فإن أحد العوائق هو أن إنشاء خطوط مستقرة والحفاظ عليها يمكن أن يكون شاقًا والآخر هو أن تكرار الجينوم الذي حدث أثناء التطور عن بعد (Postlethwait et al. ، 1998) يمكن أن يولد جينات تعمل بشكل متكرر ، مما يستلزم استهداف كليهما قبل الكشف عن النمط الظاهري. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن أن تؤخر مخازن الأمهات من mRNA والبروتينات ظهور الأنماط الظاهرية الطافرة حتى بعد استنفادها ، وبالتالي غالبًا ما تعكس الأنماط الظاهرية الطافرة تأثير فقدان الجينات على مراحل النمو اللاحقة.

يوفر Morpholinos نهجًا تكميليًا ، حيث تستهدف oligonucleotides التي يتم حقنها في كتلة البويضة المخصبة ترجمة mRNA أو التضفير. على الرغم من أن استخدام المورفولينوس يعاني من مخاوف من التأثيرات غير المستهدفة والتأثيرات العابرة ، إلا أن المورفولينوس الذي يحجب الترجمة يستنفد البروتينات المشتقة من كل من مرنا الأم واللقح ، بحيث يمكن دراسة آثار فقدان الجين المستهدف على الأحداث الجنينية المبكرة. بالإضافة إلى ذلك ، من خلال معايرة كمية المورفولينو المحقون ، يمكن ضبط درجة الضربة القاضية بدقة. وقد ثبت أن هذا مفيد بشكل خاص لعملنا في نمذجة نوع واحد من الاضطرابات الخلقية للارتباط بالجليكوزيل (CDG) ، والذي يحدث في البشر بسبب طفرة ناقصة الشكل في أحد الجينات المطلوبة للارتباط بالجليكوزيل البروتين المرتبط بـ N (تجميد ، 2007). الطفرات الصفرية المتجانسة لهذه الجينات مميتة في الثدييات (Thiel and Körner ، 2011) ويؤدي حقن تركيزات عالية من مورفولينو إلى ظهور أنماط ظاهرية جنينية شديدة ومعدل وفيات عالية في أسماك الزرد (Chu et al.، 2013 Cline et al.، 2012). ومع ذلك ، تم تسهيل الضبط الدقيق للضربة القاضية عن طريق حقن تركيزات مورفولينو منخفضة بحيث يتطابق نشاط الإنزيم المتبقي في مورفانت الزرد مع القياس في عينات من المرضى ، مما يحسن البقاء على قيد الحياة ويكشف عن أنماط ظاهرية جديدة (Chu et al. ، 2013 Cline et al. ، 2012). على الرغم من أن اتساع وسرعة المقاربات الجينية لأسماك الزرد لا تتطابق مع تلك المتاحة في اللافقاريات ، إلا أنها تُنجز بجزء بسيط من تكاليف تجارب القوارض النموذجية وبأحجام عينات تفوقها (انظر الإطار 1).

المخدرات

تتمتع أسماك الزرد بتاريخ غني في أبحاث علم السموم ، حيث يمكن ببساطة إضافة المركبات إلى مياهها. على سبيل المثال ، أثبتت أسماك الزرد أنها مفيدة في أبحاث الكحول (Jang et al.، 2012 Monk et al.، 2013 North et al.، 2010 Passeri et al.، 2009 Tsedensodnom et al.، 2013 Yin et al.، 2012). باستخدام أسماك الزرد المعدلة وراثيًا التي تعبر عن بروتين سكري مُفرَز بعلامات GFP في خلايا الكبد (Howarth et al. ، 2013 Tsedensodnom et al. ، 2013 Xie et al. ، 2010) ، وسمك الزرد الذي يعبر عن علامات البروتين الفلورية للعضيات المفرزة للخلايا الكبدية والخلايا الأخرى في الكبد (Yin et al. ، 2012) ، يمكن معالجة الآليات التي يتسبب بها الكحول والمخدرات الأخرى في تسمم خاص بالأعضاء وتسمم عضوي بوساطة. علاوة على ذلك ، تستغل شاشات الأدوية واسعة النطاق سهولة علاج الزرد بالأدوية (Peterson and Macrae ، 2012) وقد حددت المركبات المعدلة لعمليات تتراوح من التمثيل الغذائي (Nath et al. ، 2013) إلى النوم (Rihel and Schier ، 2012).


خروج الخلايا في الخلايا العصبية

Stocktrek Images / Getty Images

إفراز الحويصلة المشبكية يحدث في الخلايا العصبية للجهاز العصبي. تتواصل الخلايا العصبية عن طريق الإشارات الكهربائية أو الكيميائية (الناقلات العصبية) التي تنتقل من خلية عصبية إلى أخرى. تنتقل الناقلات العصبية عن طريق الإفراز الخلوي. إنها رسائل كيميائية تنتقل من عصب إلى عصب عن طريق الحويصلات المشبكية. الحويصلات المشبكية عبارة عن أكياس غشائية تكونت عن طريق الالتقام الخلوي لغشاء البلازما في أطراف العصب قبل المشبكي.

بمجرد تشكيل هذه الحويصلات ، تمتلئ بالناقلات العصبية وترسل نحو منطقة من غشاء البلازما تسمى المنطقة النشطة. تنتظر الحويصلة المشبكية إشارة ، وهي تدفق أيونات الكالسيوم الناتجة عن جهد الفعل ، والذي يسمح للحويصلة بالالتصاق في الغشاء قبل المشبكي. لا يحدث الاندماج الفعلي للحويصلة مع الغشاء قبل المشبكي حتى يحدث التدفق الثاني لأيونات الكالسيوم.

بعد تلقي الإشارة الثانية ، تندمج الحويصلة المشبكية مع غشاء ما قبل التشابك مما يخلق مسامًا اندماجًا. يتسع هذا المسام عندما يصبح الغشاءان واحداً ويتم إطلاق الناقلات العصبية في الشق المشبكي (فجوة بين الخلايا العصبية قبل المشبكي وما بعد المشبكي). ترتبط الناقلات العصبية بالمستقبلات الموجودة في الخلايا العصبية ما بعد المشبكي. قد يكون العصبون بعد التشابك إما متحمسًا أو مثبطًا عن طريق ارتباط الناقلات العصبية.


خيارات الوصول

احصل على حق الوصول الكامل إلى دفتر اليومية لمدة عام واحد

جميع الأسعار أسعار صافي.
سيتم إضافة ضريبة القيمة المضافة في وقت لاحق عند الخروج.
سيتم الانتهاء من حساب الضريبة أثناء الخروج.

احصل على وصول محدود أو كامل للمقالات على ReadCube.

جميع الأسعار أسعار صافي.


خيارات الوصول

احصل على حق الوصول الكامل إلى دفتر اليومية لمدة عام واحد

جميع الأسعار أسعار صافي.
سيتم إضافة ضريبة القيمة المضافة في وقت لاحق عند الخروج.
سيتم الانتهاء من حساب الضريبة أثناء الخروج.

احصل على وصول محدود أو كامل للمقالات على ReadCube.

جميع الأسعار أسعار صافي.


الحواشي

إخلاء مسؤولية الناشر: هذا ملف PDF لمخطوطة غير محررة تم قبولها للنشر. كخدمة لعملائنا ، نقدم هذه النسخة المبكرة من المخطوطة. ستخضع المخطوطة للتدقيق والتنضيد ومراجعة الدليل الناتج قبل نشره في شكله النهائي القابل للاستدلال عليه. يرجى ملاحظة أنه أثناء عملية الإنتاج قد يتم اكتشاف أخطاء قد تؤثر على المحتوى ، وجميع إخلاء المسؤولية القانونية التي تنطبق على المجلة مرتبطة.


شاهد الفيديو: The Inner Life of the Cell (قد 2022).